1. INTRODUCCIÓN
Las frutas son fuente de compuesto bioactivo como carotenoides minerales, vitamina A, complejos de vitamina B y vitamina C, los cuales están asociados a la prevención de múltiples enfermedades, ya que actúan como antiinflamatorios, anticancerígenos, antidiabéticos y previenen enfermedades cardiovasculares y coronarias [1]. De los frutos tropicales destacados como fuentes relevantes de compuestos bioactivos está el maracuyá (Passiflora edulis) y la guayaba (Psidium guajava L) [2], [3]. Sin embargo, los compuestos bioactivos presentes en las frutas suelen oxidarse fácilmente durante el procesamiento o almacenamiento por ser muy sensibles a la temperatura, la luz, los cambios de pH y los iones metálicos, entre otros [4], [5].
La degradación de compuesto bioactivo, durante el procesamiento de las frutas, ha sido reportado en diversas investigaciones, así como el comportamiento cinético de esta degradación, de aquí la importancia de evaluar métodos de procesamientos que permitan conservar este importante compuesto [6], [7]. Hay varios métodos de microencapsulación reportados en literatura [8], [9]. Sin embargo, la microencapsulación por cocristalización es un método simple que ofrece una alternativa económica para la incorporación del ingrediente activo, obteniéndose un producto en polvo, lo que resulta en una facilidad de manejo y, al mismo tiempo, preserva los componentes activos [8], [10].
La cocristalización con sacarosa se ha utilizado para producir una forma más apetecible que enmascara sabor amargo de los agentes activos con el zinc, obteniéndose productos que proporcionan ventajas significativas en las industrias farmacéutica y de dulces [11]. También se han reportado estudios que indican un alto rendimiento de atrapamiento de antioxidantes en extractos de vegetales obteniéndose productos con alta estabilidad y mejorando propiedades como actividad del agua, contenido de humedad, higroscopicidad y fluidez [12], [13]. Por otra parte, la cocristalización de antioxidantes naturales con sacarosa ha permitido obtener comprimidos con bajos tiempos de desintegración y una liberación rápida en medio acuoso [14].
Durante la cocristalización, la sacarosa, que es una estructura cristalina sólida, se aglomera en cristales irregulares de tamaño micro, con espacios vacíos y mayor superficie, proporcionando una base porosa para la incorporación del componente activo, de manera que en la solución sobresaturada se cristaliza simultáneamente ambos componentes. El proceso de cocristalización implica la incorporación de un ingrediente activo en microcristales de sacarosa por cristalización espontánea [15]. Al incorporar cuidadosamente el ingrediente activo en la sacarosa se previene la cristalización prematura de ésta, permitiendo que el proceso se realice a velocidades reproducibles [16], obteniéndose un producto cocristalizado con mejores propiedades físicas, tales como solubilidad, la humectabilidad, la hidratación, la dispersión, las propiedades antiapelmazantes y la estabilidad de los materiales encapsulados [17], [18]. Sin embargo, el exceso de material activo en relación con el agente encapsulador y el pH de los extractos en proceso de encapsulamiento, puede afectar la velocidad de cristalización, teniendo efectos negativos sobre las propiedades del producto resultante [16], [19]-[21].
El objetivo de este trabajo fue estudiar la influencia del pH y concentración de fruta en el proceso de cocristalizado de jugo de maracuyá (Passiflora edulis) y pulpa guayaba (Psidium guajava L), sobre las propiedades físicas y en la cinética de cristalización del producto.
2. METODOLOGÍA
2.1 Materia prima
Se utilizaron guayabas (Psidium guajava L.) variedad híbrida de Klom Sali, y maracuyás (Passiflora edulis) obtenidas de un lote único, procedente de Cereté (Colombia). Las frutas se seleccionaron en estado de madures comercial. Las guayabas (Psidium guajava L.) se seleccionaron en estado de madures 6, según la escala de color propuesta por [22] de forma aleatoria; y las maracuyás (Passiflora edulis), se seleccionaron en escala de color 3, propuesta por [23]. La sacarosa refinada, al 99,8 % de pureza tipo comercial, se utilizó como una matriz encapsulante. La pulpa de la guayaba se obtuvo en una despulpadora con un tamiz de malla 1.5 mm. El jugo de maracuyá de forma manual, utilizando una licuadora y colador comercial. La pulpa y el jugo se empacaron en bolsas herméticas y se refrigeraron a 4 °C.
2.2 Análisis físicos y químicos de la pulpa y jugo
A la pulpa de guayaba y el jugo de maracuyá se les realizaron pruebas de pH, según método de la AOAC10,041/84, °Brix con refractómetro marca MISCO® modelo 1043 vp, la acidez titulable, según método AOAC 31,231/ 84 y el índice de madurez se obtuvo de la relación de los sólidos solubles totales y la acidez.
2.3 Encapsulamiento
Se preparó un jarabe de sacarosa a 70 °Brix, con agua desionizada, y se calentó hasta 120 °C en una plancha de calentamiento con agitación magnética MS-H280-Pro ® hasta sobresaturación (83 °Brix) para la cristalización espontánea [15].
La pulpa de guayaba se concentró hasta 18 °Brix y el jugo de maracuyá a 40 °Brix, utilizando el rotoevaporador Heidolph D-91126 HB digital ® (a 30 °C), ajustando el pH (3,0, 4,0 y 5,0 según diseño de experimento) con hidróxido de calcio 4N y ácido cítrico, grado alimenticio, si era necesario. El pH se midió con un pH-metro digital Mettler Toledo ®, según el método de la AOAC 10,041/84. Las concentraciones en °Brix se determinaron con refractómetro marca MISCO® modelo 10431vp.
Al jarabe de sacarosa, a 70 °Brix y 120 °C, se le adicionó la pulpa de guayaba y jugo de maracuyá concentrado (10 %, 20 % y 30 %), según diseño de experimento, por separado. Las mezclas se agitaron en un homogeneizador Ultra-Turrax T-50 Basic ® a 3000 rpm hasta 40,0 ± 0,5 °C, donde se obtuvieron los respectivos cocristalizados de pulpa de guayaba y jugo de maracuyá. Posteriormente, se secaron en una estufa al vacío Thermo Scientific a 40,0 ± 0,5 °C durante 24 horas aproximadamente, se realizó una molienda y un tamizado (malla 20 de la serie de tamices de Tyler), se empacaron en bolsas de cierre fácil marca Ziplock a 30 °C y se almacenaron en un desecador.
2.4 Caracterización física de los cocristalizados
A las muestras de los respectivos cocristalizados se les determinó la humedad, en base húmeda, en una balanza de luz halógena Moisture Analyzer ®, según metodología de [24]; la densidad aparente, la solubilidad, medida como el tiempo necesario para una completa disolución de 10 g de producto en 100 mL de agua destilada a 25 ºC, y el ángulo de reposo se determinaron según la metodología propuesta por [17]; la higroscopicidad se determinó según metodología propuesta por [25], Para ello, se pesó aproximadamente 1 g de cada muestra de polvo en cajas de Petri, colocándose a 25 °C en un recipiente hermético de vidrio lleno de solución saturada de cloruro de sodio. Las muestras se pesaron durante una semana y se expresó como gramos de humedad por 100 g de sólidos.
2.5 Cinética de cristalización
Para determinar la cinética de cristalización se tomaron muestras de la mezcla de solución de sacarosa con concentraciones de fruta de 10 %, 20 % y 30 % y se llevó al reómetro TA Instrument AR 1500ex, donde se realizó una rampa de temperatura desde 80 °C a 15 °C a 1 Hz de frecuencia y torque de 10 micro Nm, descendiendo 6,5 °C/min, obteniéndose valores de viscosidad compleja vs tiempo.
Los datos experimentales de viscosidad compleja se ajustaron al modelo matemático (1) propuesto por [26] para representar la viscosidad compleja a lo largo del proceso de cristalización de un sistema, que representa el comportamiento cinético de cristalización.
Donde |η*| es la viscosidad compleja del sistema formado por la solución sobresaturada y los microcristales, |η*|0 es la viscosidad compleja inicial del sistema, que corresponde a la solución de sacarosa sobresaturada, ya mezclada al jugo concentrado, t es el tiempo de cristalización y α y β son parámetros empíricos de [26].
2.6 Diseño de experimento y análisis estadístico
El experimento se condujo bajo un diseño completamente al azar con arreglo factorial 32 para los factores pH (3,0, 4,0 y 5,0) y contenido de fruta en la mezcla (10 %, 20 % y 30 %) para las variables de respuesta: características fisicoquímicas del cocristalizado. Para determinar la influencia de los factores sobre las variables de respuesta, se empleó el procedimiento de modelo lineal generalizado (GLM), que permite construir un modelo estadístico que describe el impacto de uno o más factores en una o más variables dependientes y a partir del modelo poder optimizar la variable de respuesta, en el rango de factores estudiados. El análisis de los resultados se realizó en el software Statgraphics Centurion XV®, con un análisis de varianza (nivel de confianza será del 95 %) y un análisis de gráficos de superficie de respuesta que arrojó el modelo. El criterio de evaluación de ajuste de modelo en la evaluación de la cinética de cristalización fue el coeficiente de determinación y el análisis de residuales.
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1 Análisis físicos y químicos de la pulpa y jugo
Los valores de pH, sólidos solubles (ºBrix) obtenidos en las pulpas de guayaba (Tabla 1), coinciden con los valores reportado por [27]-[29]. Sin embargo, presenta valores por encima de los rangos de acidez titulable para guayaba Criolla Roja, reportado por [30]. De igual manera los valores de pH, sólidos solubles (ºBrix) del jugo de maracuyá coinciden con los valores reportado por [31]-[33], Sin embargo, la acidez titulable está por encima de los valores reportado por este último. Este comportamiento puede explicarse, según [34], porque la acidez puede cambiar con el cultivar y con la época del año, mientras que los valores de pH y solidos solubles (°Brix) son mayormente afectadas por el estado de madurez.
3.2 Caracterizaciones físicas de los cocristalizados
Humedad: El análisis de varianza (ANOVA) para la humedad de cocristalizado de pulpa de guayaba (Hg) y de jugo de maracuyá (Hm) (Tabla 2), muestra que la interacción no presentó diferencia significativa (con un nivel de confianza del 95,0 %), al igual que los efectos principales y cuadrático de pH. Consecuentemente, se considera eliminar este factor de los modelos estadístico. Los estadísticos r2 indican que el modelo así ajustado explica 98,91 % y 92,73 % la variabilidad de la humedad del cocristalizado de pulpa de guayaba y de jugo de maracuyá, respectivamente. Por tanto, la humedad de los cocristalizados depende sólo del contenido de fruta, ejerciendo el efecto cuadrático de la fruta una mayor influencia sobre la humedad del cocristalizado que los efectos principales.
La humedad de cocristalizado de guayabas aumentó con la concentración de fruta (Figura 1) de forma exponencial, mientras el cocristalizado de maracuyá presenta un comportamiento casi lineal, por lo cual la humedad del cocristalizado de este último, aumento en menor proporción con la concentración de fruta.
Esto puede estar relacionado con la disminución de la formación de conglomerados de mayor porosidad, en el cocristalizados de maracuyá, debido a mayores contenidos de sólidos solubles, lo cual desfavorecen la pérdida de humedad de los cocristales durante el proceso de secado [35]. La menor humedad del cocristalizado de guayaba, que se puede obtener según el modelo, fue de 1,93 % p/p a pH de 3,0 y 11,5 % de pulpa, y la de cocristalizado de jugo de maracuyá (Hm) fue de 1,72 % p/p a pH de 3,0 y 10,0 % de jugo.
El rango de humedad de cocristalizado de pulpa de guayaba (1,91 ± 0,07 % - 3,10 ± 0,06 % p/p y el de jugo de maracuyá (1,72 ± 0,04 % - 2,08 ± 0,08 %) p/p, coinciden con los cocristalizados de naranja agria (2,5 % - 4,5 %) p/p [35] y encapsulamiento por aspersión de un producto a base de lactosuero y pulpa de mango (1,58 % - 5,84 %) p/p [36]. No obstante, se reportaron valores más alto en jugo de naranja secado por aspersión (4,53 ± 0,01 % - 5,36 ± 0,01 %) p/p [37] y valores entre (4,17 % a 8,24 %) p/p en microencapsulado de chirimoya [38].
Densidad aparente: El ANOVA para la densidad aparente del cocristalizado de pulpa de guayaba (Dg) y de jugo de maracuyá (Dm) (Tabla 3) muestran que la interacción al igual que los efectos principal y cuadrático de pH no resultaron significativo (con un nivel de confianza del 95,0 %). Consecuentemente, se considera eliminar este factor de los modelos estadístico. Los estadísticos r2 indican que el modelo así ajustado explica en un 86,23 % y 99,32 % la variabilidad de la densidad aparente del cocristalizado de pulpa de guayaba y de jugo de maracuyá, respectivamente. Por tanto, la densidad aparente de los cocristalizados depende sólo de la concentración de fruta, ejerciendo el efecto cuadrático de la fruta una mayor influencia sobre la densidad aparente del cocristalizado que los efectos principales (Figura 2).
El rango de densidad aparente de cocristalizado de pulpa de guayaba (0,59 ± 0,01 g/cm3 - 0,78 ± 0,07 g/cm3) coincide con el reportado para el cocristalizado de maracuyá comercial [39], a 64 °Brix (0,64 - 0,77) g/cm3; lo reportado para bebidas de cacao en polvo (0,49 - 0,81) g/cm3 [40]; lo reportado para un suplemento alimenticio de alto contenido proteico (0,463 g/cm3 - 0,526 g/cm3) [41] y un polvo para flan con fibra dietética de nopal (0,59 ± 0,01) g/cm3 [42], encontrándose generalmente en la franja correspondiente a la mayoría de los polvos alimenticios de 0,3 g/cm3 a 0,8 g/cm3 [43]. Sin embargo, los valores de densidad aparente de cocristalizado dejugo de maracuyá (0,78 ± 0,00 g/cm3 - 0,93 ± 0,01 g/cm3), a concentración de jugo por encina de 10 % p/p, estuvieron por encima de esa franja.
La densidad aparente del cocristalizado de guayaba, para los rangos estudiados, disminuyó con la concentración de pulpa (Figura 2a), obteniéndose la mayor densidad aparente del cocristalizado de guayaba, según el modelo, en 0,75 g/cm3, a pH de 4,1 % y 11,8 % de pulpa. Esta disminución de la densidad aparente parece estar relacionada con la particularidad de la pulpa de promover la unión de partículas, unas con otras, de manera aleatoria, resultando un agregado de estructura abierta y porosa de mayor tamaño que las partículas originales [44]. Sin embargo, la densidad aparente del cocristalizado de maracuyá, presentó un comportamiento diferente, aumentando la densidad aparente con la concentración de jugo (Figura 2b), obteniéndose la mayor densidad aparente del cocristalizado de maracuyá, según el modelo, en 0,93 g/cm3, a pH de 3,00 y 30,0 % de jugo,
La mayor densidad aparente del cocristalizado de maracuyá respecto al cocristalizado de guayaba se puede atribuir a la mejor incorporación del azúcar en el jugo de maracuyá que en la pulpa de guayaba, pues al ser el cristalizado de maracuyá menos amorfo (Figura 3b), que el cocristalizado de guayaba (Figura 3a), evidencia que la sacarosa cristalizó mejor, fue más compacta y formó caras más planas, obteniéndose un producto menos poroso.
Solubilidad: El ANOVA para la solubilidad de cocristalizado de pulpa de guayaba (Sg) y de jugo de maracuyá (Sm) (Tabla 4), muestra que la interacción no presentó diferencia significativa (con un nivel de confianza del 95,0 %), al igual que los efectos principales y cuadrático de pH. Consecuentemente, se considera eliminar este factor de los modelos estadístico.
Los estadísticos r2 indican que el modelo así ajustado explica 79,67 % y 92,31 % la variabilidad de la solubilidad del cocristalizado de pulpa de guayaba y de jugo de maracuyá, respectivamente. Por tanto, la solubilidad de los cocristalizados depende sólo de la concentración de fruta, ejerciendo el efecto cuadrático de la fruta una mayor influencia sobre la solubilidad del cocristalizado que los efectos principales en la solubilidad de cocristalizados de pulpa de guayaba (Figura 4a). Sin embargo, para el cocristalizado de maracuyá tiene mayor incidencia los efectos principales (Figura 4b).
El tiempo de solubilidad de cocristalizado de guayabas aumentó (solubilidad disminuyó) con el contenido de fruta (Figura 4) de forma exponencial, mientras el cocristalizado de maracuyá presentó un comportamiento casi lineal, por lo cual la solubilidad del cocristalizado de este último, aumento en menor proporción con el contenido de fruta. La máxima solubilidad (menor tiempo de solubilidad) del cocristalizado de guayaba, que se puede obtener según el modelo, fue de 11,91 s, a pH de 4,4 % y 13,1 % de pulpa, y la de cocristalizado de jugo de maracuyá fue de 26,00 s a pH de 3,00 % y 10,00 % de jugo. Esto se explica por la menor densidad aparente del cocristalizado de pulpa de guayaba, y su porosidad, según sugiere [40], resultando que la solubilidad de las muestras podría, por tanto, estar más influenciada por la composición de la fruta y su proporción que por la azúcar refinada comercial [45].
El rango de solubilidad de cocristalizado de pulpa de guayaba (11,67 ± 1,15 s - 22,00 ± 5,57 s), fueron similares a los de lo reportado por [40] para bebidas de cacao en polvo y el de jugo de maracuyá (25,00 ± 1,00 s - 49,00 ± 3,61 s). Sin embargo, fueron menores que en cocristalizado de maracuyá comercial a 64 °Brix (37 s - 60 s) [39]. Esto influye en la reconstitución de un néctar y, dado que a bajos tiempos de solubilidad se obtiene menor tiempo en la reconstitución de un néctar, se puede decir que los cristalizados presentan buenas propiedades de reconstrucción.
Ángulo de reposo: El ANOVA para el ángulo de reposo de los cocristalizados de pulpa de guayaba (Ag) y de jugo de maracuyá (Am) (Tabla 5) muestra que la interacción, al igual que los efectos principal y cuadrático de pH, no presentaron diferencia significativa sobre los ángulos de reposo, dependiendo sólo de la concentración de la fruta en la mezcla.
Consecuentemente, se considera eliminar este factor de los modelos estadísticos. Los estadísticos r2 indican que el modelo así ajustado explica 97,92 % y 98,10 % la variabilidad del ángulo de reposo del cocristalizado de pulpa de guayaba y de jugo de maracuyá, respectivamente.
Según [43] y [46], una manera de caracterizar el comportamiento de polvos o gránulos durante el flujo es midiendo el ángulo de reposo, para lo cual los polvos que exhiben ángulos de reposo menor a 35º son polvos no cohesivos y generalmente presentan propiedades de flujo libre, mientras que los que exhiben ángulos de reposo mayores a 45º presentan comportamiento de polvos cohesivos, por tanto se puede afirmar que los cocristalizados de guayaba presentan propiedades de flujo libre a concentraciones de pulpa menores de 20 %, mientras que los cocristalizados de maracuyá a concentraciones de jugo por debajo de 10 % (Figura 5). Es de anotar que el rango de los ángulos de reposo observado dependen en gran medida de la matriz (azúcar refinada comercial) que posee ángulos de reposo entre 31º a 38° [47].
El menor ángulo de reposo del cocristalizado de guayaba que se puede obtener, según el modelo, fue de 34, 66 º a pH de 3,0 y 10,0 % de pulpa, y la de cocristalizado de jugo de maracuyá fue de 37,31 ° a pH de 3,0 y 10,0 % de jugo.
El rango de ángulos de reposo de cocristalizado de pulpa de guayaba (34,29 ± 0,44 ° - 44,53 ± 0,65 °) y el de jugo de maracuyá (37,05 ± 0,58 ° - 45,60 ± 0,32 °) coinciden con los reportados para cocristalizado de limón (26,3 ° - 30,6 °) [39] y para cocristalizado de maracuyá (27 ° - 36 °) [48]. Sin embargo, presentó valores por debajo de los reparados para encapsulados por aspersión con base a lactosuero y pulpa de mango [36].
Higroscopicidad del cocristalizado: El ANOVA para la higroscopicidad del cocristalizado de pulpa de guayaba (Hig) y de jugo de maracuyá (Him) (Tabla 6) muestra que la interacción no presentó diferencia significativa (con un nivel de confianza del 95,0 %), al igual que los efectos principal y cuadrático de pH. Consecuentemente, se considera eliminar este factor de los modelos estadístico. Los estadísticos r2 indican que el modelo así ajustado explica 92,28 % y 97,37 % la variabilidad de la higroscopicidad del cocristalizado de pulpa de guayaba y de jugo de maracuyá, respectivamente, por lo que la higroscopicidad de los cocristalizados depende sólo de la concentración de fruta, ejerciendo el efecto cuadrático de la concentración de fruta una mayor influencia sobre la humedad del cocristalizado de guayaba (que los efectos principales (Figura 6a). Sin embargo, para el cocristalizado de maracuyá tiene mayor incidencia los efectos principales (Figura 6b).
La higroscopicidad del cocristalizado de pulpa de guayaba aumentó con la concentración de fruta (Figura 6a). Según [49], la sacarosa, en estado puro, tiende a adsorber agua a partir de una actividad de agua de 0,8, mientras que la fructosa y mezclas de azúcares tienen capacidad de adsorber agua a actividad de agua más baja que la sacarosa pura, eso explica la mayor higroscopicidad observada en las muestras con mayor proporción de pulpa (que contiene azúcares reductores), dado que la actividad acuosa del cocristalizado de pulpa de guayaba estuvo entre 0,37 ± 00 a 0,49 ± 0,01 (datos no mostrados). Sin embargo, el cocristalizado de jugo de maracuyá disminuye con el contenido de fruta (Figura 6b), esto se puede explicar porque los sólidos solubles del jugo favorecen la formación de cristales menos porosos, predominando este fenómeno sobre las características de absorción [35]. La actividad acuosa del cocristalizado de jugo de maracuyá estuvo entre 0,31 ± 03 a 0,49 ± 0,00 (datos no mostrados).
La menor higroscopicidad del cocristalizado de guayaba que se puede obtener según el modelo, fue de 34,67 % p/p a pH de 3,0 % y 30,0 % de pulpa, y la de cocristalizado de jugo de maracuyá (Hm) fue de 18,22 % p/p a pH de 3,0 y 30,0 % de jugo.
El rango de higroscopicidad de cocristalizado de pulpa de guayaba (33,67 ± 2,08 % - 48,67 ± 1,15 %) p/p y el de jugo de maracuyá (18,00 ± 1,00 % - 30,00 ± 0,00 %) p/p, presentando valores superiores a los reparado para encapsulados por aspersión con base a lactosuero y pulpa de mango (11,55 % - 16,83 %) p/p [36], en microencapsulado de chirimoya (4,76 % 9,83 %) p/p [38] y polvo de mango secado al vacío [50].
3.3 Cinética de cristalización
En la Figura 7 se observa el comportamiento en proceso de cocristalización para los cocristalizados de pulpa de guayaba y jugo de maracuyá a diferentes concentraciones de fruta y pH de 3,0, dado que fue el que tuvo la mayor velocidad de cristalización (gráficos no mostrados), y este no presentó diferencia significativa en las propiedades de los cocristalizadas. En la Figura 7 se evidencia un rango de una temperatura de nucleación máxima para los cocristalizados de 42,3 °C a 46,0 °C, donde se obtiene el máximo de viscosidad compleja en un rango de 7,9 Pa.s a 9,17 Pa.s para los cocristalizados de pulpa de guayaba y de jugo de maracuyá. A partir de estos rangos de temperatura, la viscosidad compleja comienza a descender indicando la formación y precipitación de los de cristales.
En la Figura 8 se muestra la relación entre la viscosidad compleja del sistema a lo largo del tiempo de cristalización y la viscosidad compleja inicial del sistema (|η*| / |η*|0,) a diferentes concentraciones de fruta. Se observa, en general, que al principio del proceso (hasta 150 s) el comportamiento cinético es similar a lo largo del tiempo, coincidiendo las curvas en el tiempo. Sin embargo, a medida que el proceso avanza, las viscosidades observadas comienzan a diferir entre sí, siendo influenciado por la concentración de fruta en el proceso, disminuyendo la relación de viscosidad compleja con la mayor concentración de fruta, presentándose una mayor diferencia en los cocristalizados de jugo de maracuyá. Es posible que esta disminución de viscosidad compleja se deba a que la pulpa de guayaba incide más que el jugo de maracuyá, por el tamaño de partícula, en la cristalización de la sacarosa, comportándose como impurezas.
Los valores de α aumentaron con la concentración de fruta utilizadas en el proceso de cocristalización (Tabla 7), obteniéndose valores mayores en el cocristalizado de jugo de maracuyá que en el de pulpa de guayaba, indicando que la viscosidad compleja del cocristalizado es favorecida con el aumento de la concentración de fruta en el proceso de cocristalización, siendo esta mayor en los cocristalizado de jugo de maracuyá que en los de pulpa de guayaba.
El modelo propuesto por [26] explica entre un 99,78 % y 99,5 % a (Tabla 7) los datos experimentales de la viscosidad compleja a través del tiempo en el proceso de cocristalización. Valores de β superiores indican que la velocidad de cristalización aumente con el tiempo.
Todos los valores de β del cocristalizado de guayaba fueron mayores que los de maracuyá, por lo tanto, se presentó una mayor velocidad de cristalización para los cristalizados de pulpa de guayaba que en los de maracuyá para el rango de concentración de fruta. Además, se puede observar que a medida que aumenta de concentración de fruta en el proceso de cristalización disminuye el valor de β, lo que indica que la velocidad de cocristalización se ve favorecida por la menor concentración de fruta, coincidiendo con lo reportado por [51]. Esto se puede explicar porque la incorporación de la sacarosa en el jugo permite una mayor densidad de nucleación, determinada por un tiempo de nucleación más corto [26].
4. CONCLUSIONES
El pH no afecta las propiedades de los cocristalizados y la concentración de fruta en el proceso de cocristalización debe ser lo más bajo posible, siempre que garantice la funcionalidad del producto, ya que, al aumentar la concentración de fruta añadida en el proceso, aumenta el tiempo de cristalización, aumenta la humedad final del producto y disminuye su solubilidad.
El azúcar en el jugo de maracuyá se incorporó de mejor forma que en la pulpa de guayaba, siendo la densidad aparente del cocristalizados de maracuyá mayor y la higroscopicidad, menor al de la pulpa de guayaba.
El modelo propuesto por [26] explica satisfactoriamente la cinética de cristalización de la pulpa de guayaba y de jugo de maracuyá. La velocidad de cocristalización se ve favorecida por la menor concentración de fruta y se pudo observar que se presentó una mayor velocidad de cristalización para los cristalizados de pulpa de guayaba que en los cristalizados de jugo de maracuyá. La nucleación máxima para los cocristalizados se presentó en el rango de 42,3 °C a 46,0 °C.