Desarrollo de preformulados a base de Nomuraea rileyi para el control de Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Noctuidae)

Development of preformulated producís based on iiomuraea rileyi for control of Spodoptera frugiperda (Lepidoptera: Moctuidae)

LAURA VILLAMIZAR¹, CAROLINA ARRIERO², CARLOS FELIPE BOSA O.³, ALBA MARINA COTES⁴

¹ Autor para correspondencia: Química Farmacéutica M. Sc. Investigadora Laboratorio de Control Biológico. CORPOICA. C.I. Tibaitatá. Km 14 vía Mosquera. E-mail: laurafernanda@yahoo.es

² Microbióloga Industrial. Pontificia Universidad Javeriana.

³ B. Sc. M. Sc. Investigador Laboratorio de Control Biológico. Corpoica. C.I. Tibaitatá.

⁴ Ph. D. Fitopatología. Investigadora Principal. Laboratorio de Control Biológico. CORPOICA. C.I. Tibaitatá. E-mail: acotes@corpoica.org.co

Introducción

El "gusano cogollero del maíz", Spodoptera frugiperda (J. E. Smith, 1797), es considerado la plaga más importante del maíz en muchas regiones de América (García et al.1999). La gran cantidad de hospederos alternos que tiene esta plaga hace que su dispersión sea amplia, asegurando su supervivencia y la abundancia de sus poblaciones (García 2000). En la actualidad el complejo Spodoptera es uno de los problemas principales en el manejo de plagas en el país. La incidencia alta de esta plaga ha hecho necesario el uso indiscriminado de insecticidas químicos, con dosis de hasta dos y tres veces las indicadas, dejando como consecuencia el desequilibrio biológico y la generación de resistencia (García 1996).

Diferentes trabajos realizados para manejar este insecto, han demostrado que la integración de medidas culturales, físicas, biológicas y químicas selectivas pueden disminuir las poblaciones del mismo, manteniéndolas por debajo de niveles de daño económico (García 1996).

Los hongos entomopatógenos representan una alternativa para el manejo de esta plaga. Entre ellos se destacan Metarhizium spp., Beauveria spp., Verticülíum sp. y riomuraea rileyi, los cuales actúan por contacto, invadiendo el cuerpo del insecto y causando la muerte (León y Pulido 1991). El hongo N. rileyi es una alternativa promisoria para controlar las poblaciones altas de larvas de S. frugiperda, ya que son frecuentes las epizootias naturales ocasionadas por el hongo sobre Spodoptera y otros lepidópteros. Este hongo imperfecto y dimórfico en su desarrollo es diferente de los hongos oportunistas Metarhizium anisopliae (Metschin) Sorokin y Beauueria bassiana (Bals.) Vuill., pues tiene unos requisitos de crecimiento muy exigentes, posee un amplio rango de hospederos y no tiene una fase saprofítica en el suelo (Boucias et al. 2000). N. rileyi no germina, ni crece, ni esporula a temperaturas superiores a 35°C, lo cual indica que no afecta a vertebrados homeotérmicos. Los conidios expuestos a jugos gástricos de humanos se inactivan rápidamente. Cuando se administró a ratas en dosis de 1,1x10⁷ conidios/litro de aire durante una hora no se observaron anormalidades clínicas, patológicas o histopatológicas (Ignoffo et al. 1979).

A pesar de lo promisorio que puede resultar el uso de este entomopatógeno, no existe ningún bioplaguicida registrado a base de este hongo ni en Colombia ni en en el mundo, posiblemente por la dificultad que presenta este microorganismo para su producción masiva, ya que tiene unos requerimientos nutricionales específicos y es de desarrollo muy lento.

El logro de un bioplaguicida a base de este hongo, implica el cumplimiento de diversas etapas que garanticen la obtención de un producto seguro, eficaz y confiable. Dichas etapas comprenden el aislamiento del microorganismo, la evaluación de su actividad controladora, su producción masiva, estudios de preformulación, formulación, determinación de dosis y formas de aplicación, estudios de toxicidad, ensayos de campo, determinación de los mecanismos de biocontrol, estudios de impacto ambiental, caracterización molecular, estudios de mercado y patentamiento, entre otros (Gómez y Villamizar 2000)

Una etapa importante en el desarrollo de estos biocontroladores es la preformulación, la cual se define como el conjunto de actividades organizadas conducentes a la determinación de las características del principio activo y de los cambios químicos, físicos y microbiológicos que éste puede sufrir sólo o al combinarlo con los auxiliares de formulación necesarios para la elaboración del producto final (Gómez y Villamizar 2000).

Basados en los resultados de los estudios de preformulación, se desarrollan los estudios de formulación, cuyo objetivo es lograr la combinación correcta de ingredientes de tal manera que el ingrediente activo junto con los excipientes forme un bioplaguicida estable, efectivo, seguro, de fácil aplicación y aceptable para su uso (Morales 1993).

Los bioplaguicidas pueden ser formulados en diferentes presentaciones: los polvos para espolvoreo que se aplican directamente sobre las plantas empleando equipos adecuados. En éstos, la materia activa se encuentra dispersa en un vehículo inerte sólido y si es necesario se añaden al mismo agentes de fluidez y estabilizantes (Barbera 1976). Los polvos para reconstituir se presentan en forma de un polvo capaz de ser mojado y mantenerse en suspensión en el agua durante un período de tiempo largo (Barbera 1976). Los granulados tienen aspecto de arenilla con tamaños de partícula que oscilan entre 0,2 y 1,5 mm, ésta contiene el principio activo, el vehículo y el adherente (Barbera 1976). Los líquidos emulsionables constan de un principio activo en un medio graso apropiado al que acompañan los coadyuvantes necesarios, en estos productos su dilución en agua produce emulsiones formadas por gotitas finas de la formulación dispersas en agua.

La mayoría de las formulaciones de bioplaguicidas existentes en el mercado para el control de insectos plaga, fitopatógenos y malezas, están basadas en formas secas, polvos mojables o polvos de reconstitución en vehículos oleosos. El diseño de la formulación depende de la plaga, el sitio en que el plaguicida debe ser localizado, las condiciones medioambientales y el tipo de usuario al cual el producto será vendido (Gómezy Villamizar 2000).

Por tal razón, el propósito del presente trabajo fue el de estandarizar un medio de cultivo económico para la producción de conidios de N. rileyi y desarrollar prototipos de bioplaguicida para el control de S. frugiperda.

Materiales y Métodos

Microorganismo y medios de cultivo. La cepa que se utilizó en el presente estudio fue el hongo entomopatógeno N. rileyi, proveniente de Corpoica C.I. Palmira, la cual fue aislada de larvas enfermas de S. frugiperda recogidas en campo. Esta cepa se encuentra conservada en medio extracto de malta - extracto de levadura (YM) bajo aceite mineral estéril a una temperatura de 8°C y fue codificada como Nm 004 en el Banco de Germoplasma del Laboratorio de Control Biológico del Programa nacional de Manejo Integrado de Plagas de Corpoica C.I. Tibaitatá.

Medios de producción masiva. Ya que el principal requerimiento del hongo es la presencia de una fuente de nitrógeno orgánico en el medio de cultivo, se evaluaron diferentes hidrolizados de proteína, adicionados a matrices sólidas adecuadas.

Preparación de los bidrolizados de proteína

Se realizaron hidrolizados proteicos utilizando aquellas fuentes de nitrógeno que indujeron esporulación en los medios en caja de Petri: levadura seca, soya y malta. Los hidrolizados se obtuvieron siguiendo el método propuesto por Díaz y Forero (1997).

Producción masiva. La producción masiva de N. rileyi se realizó en bandejas de aluminio y en bolsas de polietileno de alta densidad que contenían diferentes matrices sólidas (salvado de trigo para las bandejas y arroz y fríjol soya para las bolsas), matrices comúnmente utilizadas en estos dos sistemas de producción.

Preparación de bandejas de aluminio

En bandejas de aluminio de 20 cm de largo por 14 cm de ancho y 3 cm de profundidad, se pesaron 34 g de matriz sólida (salvado de trigo) y se humedecieron con 120 mi del hidrolizado de proteína. Las bandejas se cubrieron con papel de aluminio y se esterilizaron durante 35 minutos a 121°C y 15 psi. Cada tratamiento consistió en la matriz sólida humedecida con cada hidrolizado de proteína. Se utilizaron cinco unidades experimentales por tratamiento.

Preparación de bolsas de polietileno

En bolsas de polietileno de alta densidad dobles, se colocaron 100 g de arroz o millo con 80 mi del hidrolizado de proteína. A las bolsas se les acondicionó un cuello en el que se ajustó un tapón de algodón y se esterilizaron durante 35 minutos a 121°C y 15 psi. Cada tratamiento consistió en la matriz sólida humedecida con cada hidrolizado de proteína. Se realizaron cinco repeticiones por cada tratamiento.

Tipos de inoculo. Con el objetivo de evaluar distintos tipos de inoculo para la producción masiva de conidios de N. rileyi, se probaron para la producción en bandeja los siguientes: suspensión de conidios que contenía 1x10⁷ conidios.ml^-1 y precultivo líquido crecido en medio YM sin agar durante 7 días y para la producción en bolsa se utilizó inoculación con fragmentos de medio de cultivo (YM) crecido con el hongo durante 15 días.

Las bandejas se cubrieron con una lámina plástica permeable al gas para evitar posibles contaminaciones y para permitir el intercambio de gases, facilitando el crecimiento del hongo (Marino 2001). Las bolsas se taparon de nuevo con el tapón de algodón y se sellaron con cinta de enmascarar (Gómez y Villamizar 1996).

Las bandejas y las bolsas se dejaron incubando en un cuarto de crecimiento con luz constante a una temperatura de 25°C.

Para evaluar el rendimiento de cada medio de cultivo, se utilizó la técnica de conteo en cámara de Meubauer, la cual permitió determinar el número de conidios producidos por gramo de medio en cada tratamiento, a los 10 días de incubación. Estos tiempos son los comúnmente utilizados para la producción de conidios de los hongos filamentosos trabajados en el Laboratorio de Control Biológico de Corpoica, seleccionando como óptimo, aquel medio en el que se presentó el rendimiento mayor. De igual manera se determinó el tiempo óptimo de incubación.

Para la evaluación en bolsas, se tomó un gramo del medio esporulado de una unidad experimental y se homogeneizó manualmente en erlenmeyers de 500 mi de capacidad con 300 mi de solución de Ttoeen 80 al 0,1%. Cada evaluación se realizó por triplicado, utilizando tres unidades experimentales (tres bolsas) por tratamiento.

Para la evaluación en bandejas, se tomaron tres muestras de 1 cm² de medio por cada unidad experimental. Éstas se homogeneizaron en 300 mi de Ttoeen 80 al 0,1% dentro de una licuadora Osterizer® por 30 segundos a velocidad media. Cada evaluación se realizó por triplicado, utilizando tres unidades experimentales (tres bandejas) por tratamiento.

Obtención del principio activo

Utilizando el medio seleccionado, se procedió a la obtención del principio activo consistente en conidios puros y secos. El medio esporulado con el hongo se lavó con una solución de Tween 80 al 0,1% para remover los conidios de la matriz sólida. Se separaron las partículas grandes de esta suspensión, haciéndola pasar por un colador. El líquido resultante se centrifugó en una centrífuga de flujo continuo CEPA 77933® a 32.000 r.p.m. El sedimento consistente en la biomasa húmeda constituyó el principio activo (conidios húmedos) y el tamaño de éstos se determinó por observación al microscopio con un lente micro-métrico. Posteriormente, la biomasa húmeda se extendió en una bandeja de aluminio y se cubrió con papel absorbente para permitir un mejor intercambio gaseoso, con el fin de realizar el secado del principio activo durante 48 h a 25°C. Finalizado el tiempo de secado, los conidios se pulverizaron en un mortero y se tamizaron por una malla de 45 µm para obtener un tamaño de partícula homogéneo.

Con el principio activo (conidios secos) se elaboraron dos prototipos de bioplaguicida siguiendo metodologías estandarizadas previamente en el laboratorio. Los sistemas de entrega diseñados para el bioplaguicida consistieron en un concentrado emulsionable y en un granulo dispersable.

Caracterización de los prototipos

Viabilidad. Para evaluar la viabilidad se utilizó la técnica de recuento en placa, para lo cual se tomó 0.1 g de cada prototipo y se llevó a un volumen de 10 mi con solución de Tween 80 al 0,1%. A partir de esta suspensión se realizaron diluciones seriadas sembrando las diluciones10^-6,10⁷ y 10^-8 por triplicado en cajas de Petri con medio YM y se incubaron por 96 horas a 25°C, tiempo en el cual se realizó el conteo de unidades formadoras de colonia (UFC), expresando los resultados como UFC.g^-1,

Germinación. Esta prueba permite calcular el número de conidios viables por unidad de volumen o peso en 24 h. Se tomó 0,1 g de cada tratamiento y se llevó a un volumen de 10 mi con Tween 80 al 0,1%. A partir de esta suspensión se realizaron las diluciones 10^-2 y 10^-3 sembrándolas en cajas de Petri con medio YM. Transcurrido el tiempo de incubación (24 h), se agregó una gota de azul de lactofenol con el propósito de teñir los conidios del hongo. En el microscopio con un aumento de 40X, se realizó la lectura del número de conidios totales (germinados y no germinados) en 10 campos ópticos seleccionados aleatoriamente, expresando los resultados como porcentaje de conidios germinados.

Concentración. La cuantificación de la concentración de conidios permite determinar el número de unidades infectivas por unidad de peso o volumen (Vélez et al. 1997). Se tomó 0,1 g de cada prototipo y se adicionó a un volumen de 500 mi de agua, esta suspensión se agitó vigorosamente y se realizó el conteo de conidios en la cámara de Meubauer, expresando los resultados en conidios por gramo.

Para la determinación de la actividad biocontroladora de los preformulados, se llevó a cabo un bioensayo bajo condiciones de laboratorio. Para tal fin, se evaluaron diferentes tratamientos que consistieron en cada prototipo (granulo dispersable y concentrado emulsionable), los excipientes de los dos prototipos, el principio activo (conidios secos), y conidios frescos provenientes de cultivo en caja de Petri. Con cada tratamiento se preparó una suspensión en una solución de Tween 80 (0,1%) y se realizaron diluciones seriadas, las cuales se ajustaron a una concentración de 1x10⁶ conidios.ml^-1. Se asperjaron 0,4 mi de cada tratamiento sobre una hoja de higuerilla (Ricinus comunms) y luego cada hoja se infestó con dos larvas de segundo instar de S. frugiperda, provenientes de una cría establecida previamente. Se utilizó un diseño experimental completamente al azar con treinta repeticiones por tratamiento y se utilizó un testigo tratado al cual se le aplicó una solución de Ttoeen 80 (0,1%). Las lecturas de mortalidad se realizaron cada 24 h durante dieciseis días. Los resultados de mortalidad se corrigieren con la fórmula de Schneider-Orelli (Ciba-Geigy 1973).

Análisis estadístico. Para todos los ensayos se utilizó un diseño completamente al azar con tres repeticiones para los ensayos de producción masiva y 30 repeticiones para el bioensayo. Para los estudios de producción masiva, la unidad experimental fue una bandeja o una bolsa y para los bioensayos, la unidad experimental consistió en cada recipiente con una hoja de higuerilla y dos larvas de S. frugiperda. Todos los resultados se sometieron a un análisis estadístico en el programa Statistix, mediante el cual se aplicó una prueba de comparación múltiple de medias de Tükey con una significancia de 0,05.

Resultados y Discusión

Medios de producción masiva. En la producción de N. rileyi realizada en bandejas con salvado de trigo humedecido con cada uno de los hidrolizados proteicos (solución de malta e hidrolizados de levadura y soya), se inocularon 10 mi de suspensión de conidios, observándose crecimiento micelial cinco días después de realizarse la inoculación. El micelio en todos los casos fue blanco y algodonoso y cubrió toda la superficie de la matriz sólida pasados siete días, tiempo después del cual el hongo empezó a esporular produciendo una coloración verde claro en la superficie de la matriz; posteriormente el cultivo tomó un aspecto polvoso y seco en todos los tratamientos. Al décimo día de incubación, el medio estaba totalmente colonizado, con una abundante producción y desprendimiento de conidios.

En los tratamientos inoculados con 10 mi de precultivo líquido, se observó micelio blanco 24 h después de haberse realizado la inoculación y 48 h después se inició la esporulación de color verde claro por toda la matriz sólida. Pasados siete días de incubación, los tratamientos presentaron hiperparasitismo, efecto que no se observó en los tratamientos en los que la inoculación se realizó con suspensión de conidios. Este hiperparasitismo posiblemente se debió a que al inocular el medio con precultivo líquido, la concentración de propágulos es mayor que en la suspensión, lo que favoreció una rápida colonización e iniciación de la esporulación y causó el agotamiento de los nutrientes del medio; sin embargo, al encontrarse el hongo dentro de un sistema con una elevada humedad relativa, los conidios producidos probablemente germinaron y produjeron micelio sobre la capa esporógena generada, por tal razón se recomienda para este tratamiento un tiempo total de crecimiento no mayor a siete días de incubación.

Cuando la matriz sólida se inoculó con suspensión de conidios, el inicio del desarrollo micelial tomó más tiempo que cuando se utilizó como inoculo el precultivo líquido, esto posiblemente se debió a que los conidios de la suspensión requieren un período de adaptación al medio de cultivo, mientras que al inocular con precultivo líquido el hongo se encuentra en crecimiento activo que se expresa como pellets de micelio en el medio líquido y al pasarlo al medio sólido, coloniza fácilmente, iniciando rápidamente la conidiación sobre la matriz sólida.

El rendimiento expresado como conidios producidos por gramo de medio de cultivo esporulado para cada sistema de inoculación fue: para el precultivo líquido 1,7x10⁹ conidios.g^-1 con el hidrolizado de soya, 1,1x10⁹ conidios.g^-1 con el hidrolizado de levadura y 2,1xl0⁹ conidios.g^-1 con la solución de malta, mientras que para la inoculación con suspensión de conidios se obtuvieron 1,2xl0⁹ conidios.g^-1 con el hidrolizado de soya, 8,9xl0⁸ conidios.g^-1 con el hidrolizado de levadura y 1,4x10⁹ conidios.g-¹ con el refresco de malta (Fig. 1).

La prueba de comparación múltiple de medias de Tukey, con un a=0,02, no detectó diferencias significativas entre los tratamientos evaluados para la producción masiva en bandejas. Las diferentes fuentes de nitrógeno orgánico utilizadas no tuvieron un efecto determinante en el rendimiento de conidios.gr^-1, así como tampoco lo tuvieron los dos sistemas de inoculación evaluados (precultivo líquido y suspensión de conidios). Sin embargo, como se observa en la figura 1, el tratamiento consistente en bandejas con salvado de trigo humedecido con solución de malta e inoculadas con precultivo líquido, presentó el mayor rendimiento (2,1x10⁹ conidios.g^-1), por lo cual sería el sistema de multiplicación masiva más adecuado para la producción de conidios de N. rileyi en bandeja. No obstante, la inoculación con precultivo líquido es un proceso que aumenta los costos de producción, ya que se requiere de un tiempo de incubación total de 14 días a partir del cultivo en caja de Petri (siete días para crecer el precultivo en medio líquido y 7 días para el crecimiento en bandeja), incrementando el consumo de energía, materiales y reactivos; mientras que cuando la inoculación se realiza con suspensión de conidios a partir de caja de Petri, sólo se requieren 10 días de cultivo después de la inoculación de las bandejas y la producción de conidios no fue significativamente diferente de la obtenida con precultivo, requiriendo menos tiempo de incubación y resultando en consecuencia más económico. Además, el hecho de utilizar un sistema bifásico de producción, implica mayor manipulación y por lo tanto mayor riesgo de contaminación, como lo señalaron Gómez y Villamizar en 1996, quienes evaluaron la multiplicación de Metarhizium anisopliae en un sistema de producción en dos fases, la primera consistente en un medio líquido de levadura-sacarosa inoculado directamente con suspensión de conidios y la segunda en granos de arroz precocidos, obteniendo una producción de 4,3x10⁸ conidios.g^-1 de arroz esporulado y 3x10⁹ conidios.g^-1 de arroz esporulado al inocular con precultivo y con suspensión de conidios respectivamente; en este trabajo se seleccionó el sistema de inoculación directa con suspensión de conidios como el más adecuado, ya que la producción en dos fases aumentó el tiempo de incubación, propició una contaminación alta de las unidades experimentales y una mayor producción de micelio, con menor rendimiento de conidios por gramo de arroz que cuando se inoculó con suspensión. Por tal razón, para este estudio se seleccionó como sistema de inoculación la suspensión de conidios provenientes de un cultivo en caja de Petri en medio YM durante 15 días, ya que la producción obtenida no presentó diferencias significativas con respecto a la determinada cuando se inoculó con precultivo y además porque este proceso reduce tiempo, energía, materiales y riesgos de contaminación. El rendimiento mayor utilizando este tipo de inoculación se observó cuando el salvado se suplemento con refresco de malta, siendo éste de 1,4x10⁹ conidios.g^-1 de salvado esporulado, seleccionándose este medio para la producción en bandeja. La producción en bandejas con salvado se ha utilizado eficientemente para otros hongos, mostrando rendimientos similares a los obtenidos en este trabajo para N. rileyi, como lo indicó Castillo en el 2000, quien realizó la producción masiva de potenciales hongos antagonistas del hongo fitopatógeno Sclerotium cepivorum en un medio de salvado de trigo suplementado con arroz y obtuvo rendimientos de 2,9x10⁹ conidios.g^-1 para Trichoderma sp., de 4,8x10⁹ conidios.g^-1 para Beauveria sp., de 3,9x10⁸ conidios.g^-1 para Aspergillus sp., de 1,1x10⁹ conidios.g^-1 para Clonostachys rosea y de 1x10⁹ conidios.g^-1 para Gliocladium virens, considerando este medio de bajo costo, fácil preparación y adecuado para la producción de conidios de estos hongos.

En el sistema de producción de conidios de N. rileyi en bolsas con arroz o millo suplementado con los hidrol izados de proteína, se evaluaron tres métodos de inoculación: precultivo líquido, discos de medio YM esporulado y suspensión de conidios. En todos los casos se evidenció la colonización del sustrato por la presencia de micelio blanco en la superficie de los granos, a partir del séptimo día se observó una coloración verde claro como signo de esporulación, la cual se tornó intensa y homogénea en todas la bolsas (Fig. 2). La producción en bolsas plásticas es de fácil manejo, permite el traslado fácil de las unidades de producción (bolsas), de un lugar a otro y la diseminación rápida del inoculo. Métodos similares de producción masiva sobre granos de cereales en bolsas, han sido indicados para el hongo entomopatógeno Beauveria brongniartii por Aregger (1992), quien obtuvo 3,24 x10⁶ conidios.g^-1 de cebada después de 14 días de incubación, 1xl0⁸ conidios.g^-1 a los 24 días y 2x10⁹ conidios.g^-1 después de 42 días de incubación; Gómez y Villamizar (1996) produjeron conidios de M. anisopliae y M. flavoridiae en bolsas con arroz precocido estéril y obtuvieron rendimientos de 1x0¹¹ conidios.g^-1 de medio esporulado para las dos especies; igualmente Winder (1999) produjo Fusarium avenaceum en un medio consistente en granos de trigo suplementado con extracto de malta, con un rendimiento de 1x10⁹ conidios.g^-1.

El rendimiento de N. rileyi en conidios por gramo de arroz esporulado obtenidos en el presente estudio con cada tratamiento evaluado fue: con el hidrolizado de soya de 6,5x10⁸ conidios.g^-1; con el hidrolizado de levadura de 9,7x10⁸ conidios.g^-1 y con la solución de malta de 3,7x10⁸ conidios.g^-1. La producción de conidios de N. rileyi por gramo de millo esporulado obtenidos en el presente estudio con cada tratamiento evaluado fue: con el hidrolizado de soya de 5,5x10⁸ conidios.g^-1; con el hidrolizado de levadura de 1,9x10⁹ conidios.g^-1 y con el refresco de malta de 1,1x10⁸ conidios.g^-1.

La prueba de comparación múltiple de medias de Tukey con un a=0,02, no detectó diferencias significativas entre los tratamientos en que se utilizó como matriz sólida arroz y se varió la fuente de nitrógeno orgánico, sugiriendo que los hidrolizados de proteína evaluados tuvieron similar efecto sobre la producción de conidios cuando se realizó el cultivo en este sustrato. La producción en millo en todos los casos fue superior y significativamente diferente de la obtenida en arroz, sugiriendo que el millo es más eficiente desde el punto de vista nutricional para la esporulación de N. rileyi que el arroz, posiblemente debido a que este sustrato presenta una cutícula que dificulta la disponibilidad de nutrientes, mientras que en el arroz, los carbohidratos están muy disponibles, favoreciendo el crecimiento vegetativo por exceso de fuente de carbono y desfavoreciendo la conidiación, la cual se estimula cuando la fuente de carbono está en concentraciones bajas (Galbraith y Smith 1969).

Dentro de los diferentes tratamientos en los cuales se utilizó como matriz sólida el millo, el análisis estadístico detectó diferencias significativas entre la utilización del hidrolizado de levadura y las dos fuentes de nitrógeno restantes, siendo el hidrolizado de levadura el que produjo el mayor y estadísticamente significativo rendimiento de conidios por gramo de sustrato. La mayor producción de conidios con esta fuente de nitrógeno se podría deber a que la levadura no sólo es una fuente de nitrógeno sino que contiene una gran cantidad de nutrientes como microelementos y vitaminas como las del complejo B, para los cuales se ha demostrado su efecto inductor de la esporulación (Villamizar 1998).

Silva y Loch (1987) produjeron 7Y. rileyi en granos de arroz suplementarios con extracto de levadura; sin embargo, el crecimiento del hongo en este medio fue muy pobre. El crecimiento micelial se obtuvo solamente siete días después de la inoculación y una esporulación reducida se observó a los 15 días de incubación, el rendimiento final fue de 6,65x105 conidios.g^-1 de arroz, resultado inferior al obtenido en este estudio en el cual se alcanzaron rendimientos superiores a IxlO8 conidios.g^-1 de arroz; es decir, aproximadamente 100 veces más conidios que los obtenidos por los mencionados autores. Esta producción mayor podría deberse a diferencias intrínsecas de las cepas de N. rileyi, a la fuente de nitrógeno utilizada, o a diferencias en los niveles de humedad de los granos de arroz que en el presente trabajo pudieron favorecer la esporulación del hongo. Los hidrolizados proteicos y las matrices sólidas utilizadas en este trabajo son una alternativa promisoria para la producción masiva de conidios de N. rileyi, ya que en todos los casos, se obtuvo un buen crecimiento micelial con altos rendimientos de conidios. Los componentes usados para los medios de cultivo son fáciles de conseguir y su costo bajo, lo cual podría hacer a estos medios adecuados para una producción a nivel industrial.

A pesar de que el rendimiento en conidios por gramo de sustrato fue mayor en el mejor tratamiento en bandejas con respecto al mejor tratamiento obtenido en bolsas, la separación de conidios a partir del salvado utilizado para las bandejas fue más dispendiosa y poco práctica para ser utilizada a nivel industrial, por tal razón se seleccionó la producción en millo para continuar con los estudios de preformulación. La separación de conidios a partir de los granos de millo fue muy sencilla y no se observaron pérdidas significativas ya que la superficie del grano quedó totalmente limpia.

Caracterización de los prototipos de bioplaguicida. Se desarrollaron dos prototipos de bioplaguicida diferentes a base de N. rileyi, los cuales consistieron en un concentrado emulsionable y en un granulado dispersable. Estos fueron caracterizados por medio de pruebas de viabilidad, germinación, humedad y concentración (Tabla 1).

Los resultados de concentración obtenidos para los dos prototipos fueron de 1,2 x 10⁹ conidios.g^-1 para el granulo dispersable y de 8,1 x 10⁹ conidios.g^-1 para el concentrado emulsionable, resultados que no fueron estadísticamente diferentes entre sí. Estas concentraciones se consideran adecuadas para este tipo de productos y son las comúnmente encontradas en los productos comerciales a base de hongos entomopatógenos. Para la reconstitución de los productos se recomendaría una relación de 1 kg en 200 l de agua, que serán utilizados por hectárea, siendo esta cantidad adecuada y similar a la utilizada con plaguicidas químicos, lo que no cambiaría drásticamente las costumbres del agricultor.

En estos prototipos, se obtuvo una viabilidad de 1x10⁹ UFC.g^-1 para el granulo dispersable y de 7,6 x 10⁹ UFC.g^-1 para el concentrado emulsionable, no siendo estos resultados significativamente diferentes de acuerdo con la prueba de Tukey. Al comparar estos resultados con los obtenidos en concentración, se podría pensar que la mayoría de los propágulos contados al microscopio están viables y que los excipientes o el proceso de formulación no afectó significativamente la viabilidad de las células.

Para la prueba de porcentaje de germinación se observó que el granulo dispersable presentó una germinación significativamente inferior a la del concentrado emulsionable, siendo ésta del 68% para el granulo dispersable mientras que para el concentrado emulsionable, la germinación fue del 91,2%. Estas diferencias en germinación pudieron deberse al proceso de formulación ya que para la elaboración del granulado dispersable, las esporas se ven sometidas a dos operaciones de secado, mientras que para el otro formulado sólo se realiza un secado. Este doble secado pudo haber afectado drásticamente a las células, dicho proceso es uno de los más limitantes en la estabilidad de los microorganismos ya que puede producir pérdida de agua intracelular, cambios enzimáticos, genéticos y daño de la membrana celular (Bahamón et al. 2001).

Los valores de humedad determinados para los prototipos fueron de 9,8 y 6,3% para el granulo y el concentrado emulsionable respectivamente, valores que se encuentran dentro del límite establecido como aceptable para productos de este tipo, el cual debe ser inferior al 10% (Mariño 2001). Sin embargo, en el proceso de formulación podría optimizarse el secado para lograr humedades inferiores al 5% que garanticen mayor estabilidad del microorganismo bajo condiciones de almacenamiento.

En la determinación de la actividad biocontroladora de los diferentes prototipos, se obtuvieron cuatro grupos que presentaron diferencias estadísticas. El primero, el cual produjo los porcentajes mayores de mortalidad de larvas de S. frugiperda, estuvo conformado por los conidios puros tanto provenientes de caja de Petri como el principio activo de los formulados consistente en conidios puros y secos provenientes del cultivo en millo, con mortalidades acumuladas de 87,1 y 82% respectivamente. El segundo grupo significativo consistió en el concentrado emulsionable, el cual causó una mortalidad del 64%, seguida por el tercer grupo estadístico consistente en el granulo dispersable que produjo una mortalidad del 30,7% y por último, los excipientes y los testigos que causaron mortalidades inferiores al 10% (Fig. 3).

Estos resultados indican que las dos formulaciones afectaron la actividad biocontroladora del microorganismo, obteniéndose porcentajes de mortalidad significativamente inferiores con los prototipos en comparación con los conidios sin formular, lo cual se puede deber a las operaciones de cada proceso o a alguno de los adyuvantes de formulación que podrían afectar las células o interferir en el proceso de infección. También se observaron diferencias estadísticas entre los dos formulados, siendo más eficiente el concentrado emulsionable que el granulo dispersable.

Esto se podría relacionar con los resultados de germinación, ya que como se mencionó anteriormente, los conidios presentes en el granulo dispersable tienen una germinación inferior a la del concentrado emulsionable, siendo éste uno de los parámetros fundamentales en el mecanismo de acción (Clarkson y Charnley 1996), que pudo repercutir en la actividad biocontroladora baja del producto.

Para los dos prototipos, los excipientes o adyuvantes no causaron ningún efecto negativo sobre las larvas del gusano cogollero del maíz, indicando que el efecto biocontrolador de los prototipos se debe a la acción del hongo entomopatógeno.

El concentrado emulsionable se seleccionó para continuar con los estudios de formulación, en los cuales se buscará la causa de la disminución de la actividad biocontroladora en los productos formulados, se ajustará la composición de los prototipos y se optimizarán las operaciones del proceso para lograr una mayor eficiencia biocontroladora.

Conclusiones

• El método de inoculación para el sistema de producción en bandeja mediante el uso de una suspensión de conidios fue el más adecuado.

• La producción masiva sobre las matrices sólidas salvado de trigo suplementario con malta e inoculado con suspensión de conidios en bandejas y los granos de millo suplementarios con el hidrolizado de levadura e inoculados con discos de agar YM crecidos con el hongo durante 15 días en bolsa fueron seleccionados como los sistemas más eficientes para la producción de conidios de N. rileyi.

• Las dos formulaciones afectaron negativamente la actividad biocontroladora del microorganismo.

• El concentrado emulsionable fue el prototipo más adecuado para continuar con los estudios de formulación y optimización.

Literatura citada

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Recibido: Abr. 22/2003 • Aceptado: Ago. 11 / 2003