2.1 Área de estudio y recolección de muestras

La Isla de Toas está ubicada en la bahía El Tablazo, formando parte del municipio Almirante Padilla del estado Zulia, en el estuario Lago de Maracaibo (Venezuela); cubre un área aproximada de 3 Km², con una población de alrededor 9.000 habitantes, y situada a 10°57'00" N y 71°40'00" O. En ella se encuentran las salinas de El Toro y Aracho, yacimientos de lignito sulfuroso y piedra caliza, arcillas de explotación en el sector sur y un pequeño yacimiento de mineral cuprífero. Sus riberas representan un hábitat propicio para el desarrollo de numerosas especies acuáticas y terrestres propias del lago, siendo aprovechadas también, para el turismo y la recreación.

En esta isla se localiza un puerto para el transporte marítimo de pequeñas embarcaciones de pesca comercial y actividades turísticas (ver fig. 1). Como resultado de estas actividades, diariamente se aprecian manchas de hidrocarburos en la superficie del agua adyacente a dicho puerto, lo que posiblemente puede provocar un efecto negativo sobre la biota acuática ^[2]-[4],[28], sin embargo esto no ha sido establecido hasta el momento.

Fuente: modificado de Google Earth

Figura 1 Ubicación del puerto de Isla de Toas, municipio Almirante Padilla, estado Zulia (Venezuela). 

En las inmediaciones del puerto se recolectaron muestras de agua superficial en recipientes plásticos de 18 L, con ayuda de un recipiente previamente desinfectado con hipoclorito de sodio (5 % v/v) y un embudo. Los recipientes fueron trasladados inmediatamente al laboratorio para la caracterización fisicoquímica inicial y montaje de las unidades de tratamiento (microcosmos). Se realizaron mediciones in situ de temperatura, pH y salinidad, empleando una sonda multiparamétrica Orion.

2.2 Ensayo de tratabilidad

Se diseñó un ensayo de tratabilidad a escala de 20 L, con dos tratamientos y un control, por triplicado. Las unidades de tratamiento (microcosmos) estuvieron constituidas por cajas plásticas rectangulares de color negro con capacidad de 49 L (9 unidades en total), desinfectadas previamente con hipoclorito de sodio (5 % v/v), donde se dispusieron 20 L de agua del puerto contaminada experimentalmente al 1 % v/v con gasoil, para garantizar la presencia de hidrocarburos durante el tratamiento. El agua fue prefiltrada (filtros convencionales de borosilicato) para minimizar la presencia de zooplancton. Un total de 180 L de agua se usaron para el montaje de las unidades experimentales (ver fig. 2).

Figura 2 Diagrama de las unidades de tratamiento (microcosmos) usadas en el presente estudio. 

En los tratamientos se aplicaron las estrategias de bioestimulación (T1) y bioaumentación (T2), mediante la inoculación de un consorcio microbiano autóctono (microalga-bacterias) al 20 % v/v y fertilización con 0,25 mL/L de Nitrofoska®. Estas proporciones fueron obtenidas en ensayos previos, bajo condiciones de laboratorio ^[29]. El control consistió en agua del sitio de estudio con 1 % v/v de gasoil y sin complementos (ver tabla 1).

En todas las unidades se aplicó de igual manera: aireación mecánica y fotoperíodo luz: oscuridad de 12:12 h a 6 Klux, durante 70 días. La fertilización se realizó al inicio (día 0) y a los 35 días de tratamiento, a fin de garantizar la disponibilidad de nutrientes inorgánicos para el crecimiento microbiano. Diariamente se controlaron las pérdidas de volumen por evaporación en las unidades experimentales, mediante la adición de agua destilada estéril.

2.3 Seguimiento de las condiciones de tratamiento

Durante los 70 días de ensayo se retiraron manualmente muestras de 250 mL de agua tratada cada 7 días, para el análisis de parámetros fisicoquímicos y microbiológicos en todos los microcosmos. Estas muestras fueron filtradas (filtros convencionales de borosilicato), para eliminar la interferencia debido a la presencia de microalgas.

Los parámetros fisicoquímicos analizados fueron: temperatura (termómetro convencional de mercurio), pH (método potenciométrico), demanda química de oxígeno (DQO) (método volumétrico con digestión en reflujo cerrado), nitrito (método colorimétrico estándar), nitrato (método de reducción en la columna de cadmio), nitrógeno total Kjeldahl (NTK) (método volumétrico), nitrógeno total (N-total) (NTK + nitrato + nitrito), ortofosfato (método colorimétrico del ácido vanadomo-libdofosfórico), fósforo total (método colorimétrico del ácido vanadomolibdofosfórico, previa digestión ácida), de acuerdo con los métodos estandarizados ^[30]. Los hidrocarburos totales del petróleo (HTP) y las fracciones de hidrocarburos SARA (saturados, aromáticos, resinas y asfaltenos), se determinaron sólo al inicio y final del tratamiento por gravimétria ^[30].

En cuanto a los parámetros microbiológicos, se cuantificaron: densidad celular de la microalga, mediante observación directa al microscopio de campo claro ^[31]; bacterias heterótrofas aerobias, por la técnica de dilución en placas ^[30]-[31]; y pigmentos fotosintéticos (clorofila a, clorofila b, clorofila total y carotenoides), por espectrofotometría ^[32]-[33]. Adicionalmente, para la biomasa de Chioreila spp. se calcularon las velocidades de crecimiento (µ) y tiempos de duplicación (td), de acuerdo con las ecuaciones de Mo-nod ^[34]-[35].

3.1 Características del agua superficial del puerto

En la tabla 2 se presentan los resultados de la caracterización fisicoquímica inicial del agua del puerto de Isla de Toas, antes del proceso de contaminación con gasoil. Los valores de HTP (2.826,4±354,2 mg/L) excedieron los límites permisibles (ausentes) para aguas marinas o de medios costeros, destinadas a la cría y explotación de moluscos consumidos en crudo (tipo 3), y para aguas destinadas a balnearios, deportes acuáticos, pesca deportiva, comercial y de subsistencia (tipo 4), así como también para la descarga a cuerpos de agua naturales (20 mg/L) ^[37]. De igual manera, el contenido de materia orgánica (medida como DQO) (427,9±157,8 mg/L), estuvo por encima de lo establecido por la legislación venezolana para el vertido a ecosistemas acuáticos naturales (350 mg/L) ^[37].

Tabla 2 Caracterización fisicoquímica inicial (n=3) de agua superficial del puerto de Isla de Toas y límites permisibles de la normativa venezolana. 

X: media aritmética, DE: desviación estándar, ^a[37], ^bresiduos de petróleo, ^cdiferencia <3°C, ^dnitrito+nitrato, ^eaceites minerales e hidrocarburos, -: no presenta.

Esta caracterización inicial del agua del puerto justifica la aplicación de tecnologías de tratamiento para su adecuación a los requerimientos de la legislación, particularmente debido a los contenidos de materia orgánica e HTP (ver tabla 2).

3.2.1 Densidad microalgal

El desenvolvimiento de la densidad micro-algal en los microcosmos se muestra en la figura 3. No se observaron diferencias significativas entre el control y T1 (prueba de Tukey, p>0,05), pero T2 difirió significativamente (prueba de Tukey, p<0,05) del control y T1.

Figura 3 Densidad media de la microalga Chiorella spp. y densidad bacteriana durante el tratamiento de agua del puerto de Isla de Toas con consorcio microbiano autóctono. A) Control, B) Tratamiento bioestimulado (T1) y C) Tratamiento bioaumentado (T2). 

El control exhibió una fase de adaptabilidad hasta el día 28 sin producción de biomasa (ver fig. 3A), la cual comenzó a incrementar del día 35 al 42 (1,10±0,56x104 cél/mL), como resultado del suministro adicional de fertilizante. Luego de pequeñas fluctuaciones se obtuvo la mayor densidad de la microalga Chiorella spp. al final del ensayo (día 70), con una media aritmética de 2,96±2,02x10⁴ cél/mL.

En T1 no se presentó fase de adaptabilidad (ver fig. 3B), mostrando un aumento continuo en la densidad microalgal hasta el día 21, con una máxima exponencial de 2,51 ±1,06x10⁶ cél/ mL. Posteriormente, se inició la fase de declive hasta el día 63 (5,02±0,84x10⁵ cél/mL), para finalizar con un incremento de la biomasa hacia el día 70 de experimentación con 2,24±1,31x10⁶ cél/mL. Por su parte, el T2 mostró una fase de adaptación de 14 días (ver fig. 3C), para así iniciar el crecimiento exponencial hasta el día 42 (2,01±1,04x10⁶ cél/mL), favorecido por la segunda fertilización realizada en el día 35. La mayor densidad de Chiorella spp. se reflejó a los 70 días con una media de 2,33±2,08x10⁶ cél/mL. Estos resultados aportan evidencia del proceso de adaptación de la microbiota autóctona presente en las aguas adyacentes al puerto, en cuanto a la presencia de hidrocarburos, utilizándolos como fuentes de carbono y/o energía ^{[4], [10], [17], [20]}.

En las unidades de estudio la media aritmética para la biomasa de la microalga Chiorella spp., fue la siguiente: T2 (1,03±0,81x10⁶ cél/mL) > T1 (1,64±8,10x10⁵ cél/mL) > control (6,98±8,97x10³ cél/mL), mientras que las velocidades máximas de crecimiento fueron de: 0,18; 0,26; y 0,21 div/d, con tiempos de duplicación celular de: 3,76; 2,65; y 3,34; respectivamente. No obstante, estos índices se pudieron ver subestimados por la aparición de organismos zooplanctónicos en las unidades experimentales, particularmente en T1 y T2. Al respecto, Esteves ^[38^] indicó que la actividad de "pastoreo" del zooplancton herbívoro sobre el fitoplancton está caracterizada por el consumo de grandes cantidades de células vegetales, pudiendo disminuir grandemente la productividad primaria del sistema biológico.

Se ha reportado el efecto inhibidor de los hidrocarburos sobre las comunidades microalgales acuáticas, provocando una disminución del crecimiento y otras consecuencias sobre dichas poblaciones ^{[23],[25],[28],[39]}. Al respecto, Otero-Paternina et al. ^[28], observaron el efecto del hidrocarburo fenantreno sobre Chiorella vulgaris, en concentraciones de 1 hasta 10.000 ug/L, obteniendo velocidades de crecimiento entre 2,7 y 6,7x10⁵ cél/ mL, las cuales resultan inferiores a las del presente estudio. No obstante, cuando se implementan consorcios microbianos autóctonos, este efecto de inhibición se contrarresta, generando un crecimiento microbiano a expensas de las fuentes de carbono presentes (mixotrofía) ^{[10],[19]-[21]}, según lo observado en el presente trabajo (ver fig. 3).

Pigmentos fotosintéticos

Las concentraciones de pigmentos fotosintéticos (clorofila a, clorofila b, clorofila total y carotenoides), al igual que la densidad celular de Chiorella spp. del control, no mostraron diferencias significativas con respecto a T1 (prueba de Tukey, p>0,05), mientras que T2 difirió significativamente (prueba de Tukey, p<0,05) con respecto al control y T1.

La mayor producción de pigmentos foto-sintéticos se obtuvo en T2 (ver tabla 3), con valores medios de clorofila total de 1,30±0,71 ug/mL, mientras que el control exhibió las menores concentraciones (0,10±0,07 ug/ mL), como resultado de las estrategias de bioestimulación y bioaumentación en T1 y T2, respectivamente. De manera general, el desenvolvimiento de las concentraciones de pigmentos se correspondió con las tasas de crecimiento microalgal (ver fig. 3). También se evidenció un comportamiento análogo entre las concentraciones de clorofila total y las de carotenoides.

En contraste a los resultados del presente trabajo, Adoki ^[39] reportó una disminución de biomasa y contenido de clorofila durante bioensayos con microalgas autóctonas y el efluente procedente de una fábrica de fertilizantes nitrogenados, contaminado experimentalmente con petróleo (de 0,2 a 1 %) y sedimento de la misma industria. No obstante, en dicho estudio no se usaron las estrategias de bioestimulación y bioaumentación, lo que explica la diferencia en cuanto al desempeño de la comunidad microbiana.

Asimismo, El Fatah et al. ^[10] encontraron concentraciones de clorofila a: 0,67±0,02; clorofila b: 1,09±0,10 y carotenoides: 0,25±0,04 ug/mL a los 14 días de ensayo para un consorcio de Chiorella kessieri y Ana-baena oryzae en cultivos tipo batch contaminados con 1 % de petróleo, las cuales son comparables a los datos aquí presentados.

3.2.3 Parámetros fisicoquímicos

pH

Los valores de pH se mantuvieron relativamente estables cerca del rango de neutralidad, bajo todas las condiciones de ensayo, con una ligera disminución durante el día 14: 6,85±0,25 (control); 6,48±0,33 (T1) y 6,67±0,16 (T2), con medias aritméticas de: 7,59±0,21; 7,90±0,11 y 7,65±0,15, respectivamente. No se observaron diferencias significativas del pH entre las condiciones de tratamiento (p>0,05). Estos valores garantizaron la supervivencia de una amplia variedad de microorganismos neutrófilos, capaces de participar en las reacciones de biodegradación de hidrocarburos ^{[1],[5],[7]-[8],[14],[41]}.

Balba et al. ^[42] señalaron que la oxidación de los hidrocarburos produce ácidos grasos que son utilizados por las bacterias o liberados al medio. En tal caso, el pH del sistema disminuye, según lo observado en el día 14 de este ensayo. No obstante, estas variaciones de pH pueden amortiguarse por la alcalinidad disponible y deben monitorearse continuamente, ya que las propiedades fisicoquímicas del agua y la biodisponibilidad de los hidrocarburos juegan un papel determinante para una biorremediación exitosa ^[5],[8].

Los valores de pH en T1 y T2 cumplieron con lo establecido en la normativa venezolana para aguas tipo 3 y 4 (6,5-8,5), así como para la descarga a cuerpos de agua naturales (69) ^[37].

Materia orgánica

Los microcosmos control, T1 y T2 reflejaron una disminución continua del contenido de materia orgánica (medida como DQO), durante el periodo de tratamiento (ver fig. 4A). Las concentraciones medias de DQO fueron de: 766,6±62,0; 678,1±90,4 y 606,7±185,8 mg/L, es decir: control > T1 > T2, con rangos de: 709,2±28,0-924,1±41,2; 556,3±22,3-858,0±32,2 y 313,1±36,5-884,4±71,1 mg/L, respectivamente. La prueba de Tukey mostró diferencias significativas (prueba de Tukey, p<0,05) entre el control y los tratamientos.

Figura 4 Variación de: A) Demanda química de oxígeno (DQO), B) Nitrógeno total (N-total) y C) Fósforo total (P-total) en las unidades experimentales, durante el tratamiento de agua del puerto de Isla de Toas con consorcio microbiano autóctono. Las barras verticales indican la media aritmética ± desviación estándar para n=3. 

La mayor eficiencia de remoción de materia orgánica (DQO) se obtuvo en T2 (64,6± 4,8 %), seguido de T1 (35,2±4,5 %) y el control (23,3±2,3%) (ver fig. 4). Las concentraciones finales (día 70) de DQO de T2 (ver fig. 4A; 313,1±36,5 mg/L), lograron cumplir con el límite de descarga establecido en la legislación venezolana, a cuerpos de agua naturales (350 mg/L) ^[37].

Los resultados son comparables a los reportados por Riaño et al. ^[43], con remociones de DQO soluble entre 29,0 y 59,2 % para el tratamiento de efluentes de una industria procesadora de pescado, en fotobiorreactores inoculados con microalgas Spiruiina piatensis y Chiorella sorokiniana; en simbiosis con bacterias aerobias, siendo inferiores a los señalados por Mannina et al. ^[44], para aguas salinas sintéticas contaminadas con gasoil (20 mg/L), tratadas en una planta piloto provista de un biorreactor de membrana, con una remoción de DQO de 91 %. Estas diferencias pueden deberse a la naturaleza propia del efluente en tratamiento y de los microorganismos involucrados.

Las remociones de materia orgánica obtenidas (ver fig. 4A) son indicativas de la utilización del carbono orgánico disponible (principalmente hidrocarburos), por parte de la comunidad microbiana presente para sus funciones metabólicas (ver fig. 3), con mayor proporción en T2 (consorcio microbiano autóctono). De esta manera, las bacterias obtienen carbono al mineralizar los sustratos orgánicos, mediante el consumo de oxígeno disuelto del sistema (metabolismo heterotrófico), mientras que las microalgas seguirían un metabolismo mixotrófico ^{[10],[19]-[21]}.

Figura 5 Contenido de materia orgánica (medido como DQO) en las unidades experimentales (inicial, final y % de remoción), durante el tratamiento de agua del puerto de Isla de Toas con consorcio microbiano autóctono. Las barras verticales indican la media aritmética ± desviación estándar para n=3. 

Nitrógeno

Los niveles de nitrito se encontraron en los rangos de 0,013-0,118 mg/L, para el control; de 0,011-0,044 mg/L, para T1; y de 0,0130,069 mg/L, para T2; cuyos valores mostraron diferencias significativas con respecto al control (prueba de Tukey, p<0,05). De manera general, las concentraciones de NO_2- fueron estables y bajas en el periodo de estudio.

El nitrato, por su parte, exhibió rangos de concentraciones de 0,05-0,19; 0,05-1,80; y de 0,05-1,45 mg/L, para el control T1 y T2, respectivamente. Los tenores máximos en los tratamientos se obtuvieron en los días de fertilización con Nitrofoska^® (días 0 y 35), el cual contiene N bajo esta forma química, pero fue consumido rápidamente por la comunidad autótrofa presente, estimulando su crecimiento (ver fig. 3). Las concentraciones de NO₃- en los tratamientos difirieron significativamente del control (prueba de Tukey, p<0,05), pero no entre ellos (prueba de Tukey, p>0,05).

Todas las concentraciones de nitrógeno inorgánico (NO₂- + NO₃-) en los microcosmos, estuvieron por debajo del límite máximo permisible para la descarga a cuerpos de agua naturales, establecido en la norma ambiental venezolana (10 mg/L) ^[37].

El NTK presentó concentraciones medias de 1,76±1,61 mg/L, para el control; 4,65±3,04 mg/L, para T1; y de 3,52±2,87 mg/L, para T2; como resultado de la activación del metabolismo microbiano, producto de las estrategias de fertilización e inoculación de biomasa (NTK = NH₄+ + N-orgánico) [³⁷]. Por ello, se obtuvieron diferencias significativas de las concentraciones de los tratamientos con respecto al control (prueba de Tukey, p<0,05), pero no entre estos (prueba de Tukey, p>0,05).

En la figura 4B se muestra la evolución temporal de las concentraciones de N-total, en las unidades de experimentales. En el control se observaron ligeras fluctuaciones con valores máximos en los días 14 (5,54±0,32 mg/L) y 35 (3,96±0,21 mg/L), con una media aritmética de 1,90±1,62 mg/L. Para T1 y T2 se reflejaron las mismas tendencias de variación en las concentraciones, con tenores ligeramente superiores para T1, y picos más elevados durante los días 0 y 35, resultantes de la fertilización e inoculación de biomasa, respectivamente. Las concentraciones de N-total oscilaron entre 1,88±0,12 y 10,25±0,82 mg/L, para T1; y entre 0,63±0,08 y 10,05±0,56 mg/L, para T2. Al igual que el resto de las formas de N analizadas, el contenido de N-total entre los tratamientos no fue significativamente diferente (prueba de Tukey, p>0,05), pero estos difirieron significativamente respecto al control (prueba de Tukey, p<0,05).

La dinámica del nitrógeno en los procesos de tratamiento biológico es un fenómeno complejo. El N-orgánico particulado se hidroliza abióticamente a N-orgánico soluble que es utilizado por bacterias heterotróficas y convertido en NH₄+ El NH₄+ sirve como fuente de N para la síntesis de nueva biomasa y como la única fuente de energía para el crecimiento de bacterias oxidantes de amonio; la producción de NO₂- a partir de NH₄+ es llevada a cabo por estas bacterias. La siguiente etapa de oxidación para producir NO₃- es mediada por bacterias oxidantes de nitrito. La desnitrificación heterotrófica es un proceso secuencial que consta de cuatro pasos de reducción: NO₃- a NO₂-, NO, N₂O y N₂ [⁴⁵]-[⁴⁶]. La simultaneidad de estas reacciones, rigieron la movilidad de las diferentes formas de N en las unidades de tratamiento (ver fig. 4B).

Se obtuvieron remociones medias de N-total de: 27,6±1,64; 79,8±2,05 y 87,7±1,95 % para el control, T1 y T2, respectivamente. Estos valores son superiores a los reportados por Mannina et al. ^[44], para el tratamiento de aguas salinas sintéticas contaminadas con gasoil (20 mg/L) en una planta piloto provista de un biorreactor de membrana, con una remoción de N-total de 53 %, lo cual puede ser adjudicado al efecto potenciador del metabolismo microbiano, como resultado de las estrategias de bioestimulación y bioaumentación.

Las concentraciones de N-total en el control y los tratamientos, cumplieron con la normativa de descarga a cuerpos de agua naturales establecida en Venezuela (40 mg/L) ^[37].

Fósforo

Las concentraciones medias de ortofosfato durante los ensayos se ubicaron en: 6,93±9,45; 4,05±2,50 y 3,51±2,92 mg/L, para el control T1 y T2, respectivamente, cuyo comportamiento en función del tiempo fue equivalente a la de P-total (ver fig. 4C). La prueba de Tukey indicó que existieron diferencias significativas de los tratamientos con respecto al control (p<0,05), mientras que T1 y T2 no fueron estadísticamente distintos (p>0,05).

La disponibilidad de ortofosfato proporcionó soporte al crecimiento autotrófico de las microalgas en los días subsiguientes a la adición de fertilizante. Notoriamente en el día 0, para T1; y día 35 para control y T2 (ver fig. 3). El PO₄ ^-3 se emplea como nutriente esencial en las actividades metabólicas y la síntesis de biomasa. Las células de micro-algas absorben y almacenan N y P para la síntesis de proteínas, lípidos, adenosin trifosfato (ATP) y otras biomoléculas ^[12],[18].

Con relación a la variabilidad de P-total, en la figura 4C se presentan sus concentraciones durante los ensayos. En el control los valores fluctuaron de 0,15±0,06 a 29,32±1,56mg/L; en T1 de 0,22±0,08 a 8,30±1,65 mg/L; y en T2 de 0,35±0,07 a 12,62±2,32 mg/L. Durante los primeros 35 días se observó un comportamiento relativamente estable y similar para las tres condiciones de prueba. Posteriormente, el control experimentó un incremento progresivo hasta su máxima concentración en el día 70 (29,32±1,56 mg/L). En T1 se mantuvo una concentración media de 7,15±1,01 mg/L, mientras que en T2 aumentó ligeramente en el día 56 (12,62±2,32 mg/L). No se detectaron diferencias significativas entre los tratamientos (prueba de Tukey, p>0,05), pero sí de estos con respecto al control (prueba de Tukey, p<0,05), en cuanto a las concentraciones de P-total.

El aumento de las formas de P durante el tratamiento de aguas del puerto de Isla de Toas, particularmente en el control, puede estar relacionado con: 1) productos de excreción de organismos zooplanctónicos al consumir células microalgales ^[38], ^[47-48], y 2) mineralización de células muertas de microorganismos, que devuelven al medio sus constituyentes celulares como N y P ^[49]-[50], lo cual coincide con el desenvolvimiento de la comunidad microbiana de los microcosmos (menor densidad celular), particularmente hacia finales del periodo de experimentación (ver fig. 3).

Las remociones medias de P-total en el presente estudio fueron: control <0,1 %; T1 16,1±0,38 %; y T2 44,7±1,18 %, las cuales mostraron un comportamiento similar al descrito por Venosa ^[51], quien señaló que las mayores disminuciones de fósforo en medios acuáticos contaminados con hidrocarburos, tenían lugar en las primeras semanas de estudio, disminuyendo de manera secuencial, pero en menor grado hasta el final del ensayo (ver ^{fig. 4C}). De igual manera, los resultados son comparables a los descritos por Mujtaba et al. ^[19], para un sistema de consorcio simbiótico en el tratamiento de un agua residual sintética. Estos investigadores observaron una alta tasa de eliminación de N, P y DQO, indicando que la capacidad de captación de nutrientes por Chiorella vulgaris se incrementó en presencia de la bacteria Pseudomonas putida, lo cual también se obtuvo en T2.

Díaz ^[40] determinó una remoción de P-total de 37,18 % durante el tratamiento de los residuos líquidos de una fosa de almacenamiento de agua petrolizada, aplicando inóculo de microalgas (incluyendo bacterias asociadas), fertilización y un periodo de ensayo de 90-105 días. Por su parte, Pérez-García et al. ^[21] obtuvieron una remoción de P de 31,5 % en aguas residuales sintéticas, aplicando un consorcio de C. vulgaris y Azospirillum brasilense en un reactor cónico invertido. Estos resultados son inferiores a los encontrados en T2, por efecto de la bioaumentación con fertilización y adición de biomasa microbiana.

De manera general, las concentraciones de P-total en los tratamientos se ubicaron por debajo del límite máximo establecido en la normativa venezolana para la descarga a cuerpos de agua naturales (10 mg/L) ^[37], con excepción del día 56 en T2 (12,62±2,32 mg/L) y en el control a partir del día 56 de ensayo (ver fig. 4C).

Hidrocarburos

En la tabla 4 se presentan las concentraciones iniciales y finales de las fracciones de hidrocarburos, así como las de HTP y sus porcentajes de remoción en las unidades de ensayo. La fracción de asfaltenos se presentó en niveles <0,2 mg/L, en todas las condiciones experimentales. Las concentraciones finales más bajas de hidrocarburos se observaron en T2.

El límite permisible de HTP establecido en la normativa ambiental venezolana para el vertido a cuerpos de agua naturales (20 mg/L) [³⁷], no pudo alcanzarse bajo las condiciones establecidas en este estudio, por lo que el efluente tratado requiere de un tratamiento complementario para cumplir con dicha norma. No obstante, se obtuvieron altas tasas de biodegradación del gasoil añadido. Al respecto, las remociones de hidrocarburos saturados, aromáticos, resinas e HTP estuvieron entre 6,6 y 81,7 % (ver fig. 5, tabla 4). Se obtuvieron diferencias significativas (prueba de Tukey, p<0,05) para las remociones de hidrocarburos saturados, aromáticos e HTP, de los tratamientos con respecto al control, así como entre T1 y T2. Los niveles de resinas (compuestos recalcitrantes) no fueron significativamente diferentes (p>0,05) para las condiciones de tratamiento.

Tabla 4 Fracciones de hidrocarburos durante el tratamiento de agua del puerto de Isla de Toas contaminadas con 1 % v/v de gasoil, usando consorcio microbiano autóctono. 

HTP: hidrocarburos totales del petróleo. La fracción de asfaltenos se presentó en niveles <0,2 mg/L.

Figura 6 Remoción de las fracciones de hidrocarburos (SARA) e hidrocarburos totales del petróleo (HTP) durante el tratamiento de agua del puerto de Isla de Toas contaminadas con 1 % v/v de gasoil, usando consorcio microbiano autóctono. La fracción de asfaltenos se presentó en niveles <0,2 mg/L. Las barras verticales indican la media aritmética ± desviación estándar para n=3. Letras diferentes en una misma fracción indican diferencias significativas (prueba de Tukey, p<0,05). 

Estas diferencias resultaron del aumento de la productividad microbiológica (ver fig. 3), producido por la aplicación de las estrategias de bioestimulación y bioaumentación.

Muchos estudios han descrito la biodegradación de hidrocarburos por parte de comunidades microbianas ^{[1],[4],[52]-[54]}, como base para los procesos de biorremediación de aguas y suelos impactados. Mittal y Singh ^[52] indicaron que la aplicación de consorcio bacteriano, nutrientes y factores ambientales resultó en 79,16 % de eliminación de HTP en 60 días, en comparación con la remoción de sólo 30,24 % llevada a cabo por microflora nativa. Similarmente, Has-sanshahian et al. ^[23] reportaron que el uso de bioaumentación y consorcio bacteriano (A. borkumensis - Thaiassolituus oleivorans) generó una degradación de 70 % de petróleo crudo (0,01 %). Dichos datos son comparables a los obtenidos en el presente trabajo.

Finalmente, estos resultados demuestran la eficiencia del consorcio microbiano autóctono empleado, siendo capaz de degradar las fracciones de hidrocarburos del petróleo, presentes en el gasoil añadido (ver fig. 4A). Así, la cooperación entre microalgas fototróficas y bacterias heterotróficas mejora potencialmente la degradación de muchos contaminantes, incluyendo derivados del petróleo. Además, la selección adecuada de los microorganismos apropiados para conformar los consorcios, es de primordial importancia para garantizar el éxito y la eficiencia del proceso de degradación ^[2],[23].